Тезаурус

Поиск:

  • Все
  • А
  • Б
  • В
  • Г
  • Д
  • Е
  • Ё
  • Ж
  • З
  • И
  • Й
  • К
  • Л
  • М
  • Н
  • О
  • П
  • Р
  • С
  • Т
  • У
  • Ф
  • Х
  • Ц
  • Ч
  • Ш
  • Щ
  • Э
  • Ю
  • Я
  • Все
  • A
  • B
  • C
  • D
  • E
  • F
  • G
  • H
  • I
  • J
  • K
  • L
  • M
  • N
  • O
  • P
  • Q
  • R
  • S
  • T
  • U
  • V
  • W
  • X
  • Y
  • Z
Изотермическая амплификация LAMP

Изотермическая амплификация (loop-mediated isothermal amplification, LAMP) — технология амплификации ДНК, которая, в отличие от ПЦР, не требует температурного цикла. Для LAMP используется не термостабильная полимераза Taq, как для ПЦР, и полимераза Bst (из Bacillus stearothermophilus). Bst менее термостабильна, чем Taq, но она вытесняет вторую цепь ДНК сама, поэтому в первом шаге ПЦР — расплавлении нитей ДНК — нет необходимости, и реакция проходит при постоянной температуре 60–65оС. Благодаря тому, что LAMP проходит весьма быстро (за 20 мин или быстрее), не требует термоциклера, а продукт реакции легко детектируется, она считается перспективной дешевой альтернативой ПЦР для диагностических приложений. Изотермическая петлевая амплификация, совмещенная с обратной транскрипцией (RT-LAMP), может использоваться для детекции РНК.

Метод LAMP описал Цугунори Нотоми в 2000 году. Нотоми предложил использовать не два, а четыре праймера — два внутренних и два внешних, узнающих в общей сложности шесть различных участков искомой ДНК. (Внутренние узнают по два участка каждый.) Праймеры организованы таким образом, что при амплификации формируют петли, соединяющие амплифицированные фрагменты ДНК.

 LAMP.jpg

1. Раствор, содержащий ДНК-мишень, нагревается до 65оС.

2. С ДНК-мишенью (для простоты нарисована одна нить) взаимодействуют прямые праймеры. Внутренний праймер FIP (forward inner primer) комплементарен участку F2c в ДНК, а его «хвост» F1c имеет такую же последовательность, как одноименный участок ДНК, и, следовательно, комплементарен участку F1 новой нити, которая синтезируется с этого самого праймера.

3. Внешний прямой праймер F3 комплементарен участку F3c ДНК-мишени.

4. Нить ДНК, которая начала синтезироваться с внешнего праймера, вытесняет из двойной спирали (благодаря вымещающей активности Bst-полимеразы) нить, синтезированную с внутреннего праймера. С вытесненной нитью взаимодействует внутренний обратный праймер BIP (backward inner primer), а ее 5’-конец образовал петлеобразную структуру.

5. Внешний обратный праймер B3 комплементарен участку B3c, с него синтезируется новая нить и вытесняет нить, синтезированную с внутреннего праймера.

6. Вытесненная из дуплекса нить со шпильками на обоих концах — такую структуру называют гантелеобразной (dumbbell structure). Участок F1 выступает в роли праймера: полимераза может наращивать его 3’-конец. Но при этом новый праймер FIP может отжигаться на F2c.

7. Результат полимеризации с двух праймеров. Образуется новая шпилька.

8, 9. С праймера B1 синтезируется новая нить, вытесняя старую, и возникает Л-образная структура. С вытесненной нитью и новым праймером BIP повторяются шаги 6, 7

10. С однонитевой петлей взаимодействует новый праймер FIP. Цикл повторяется, зигзагообразная структура растет.

 

У LAMP есть множество различных модификаций, например, использование дополнительной пары «петлевых» праймеров, и др.